ОХНМЖурнал физической химии Russian Journal of Physical Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-4537
  • ISSN (Online) 3034-5537

Полиэлектролитные комплексы альгинат-хитозан как носители для фторированного тетрафенилпорфирина в фотосенсибилизирующих системах генерации синглетного кислорода

Код статьи
10.31857/S0044453723120178-1
DOI
10.31857/S0044453723120178
Тип публикации
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 97 / Номер выпуска 12
Страницы
1748-1756
Аннотация
Иммобилизацией фторированного тетрафенилпорфирина (ФТФП) из раствора в ацетоне на пленки полиэлектролитных комплексов на основе альгината натрия (АН) и хитозана (ХТ), а также на твердые водонерастворимые гели альгината и хитозана получены водонерастворимые фотосенсибилизирующие (ФС) системы, активные в генерации синглетного 1О2 кислорода. В присутствии полученных полимерных ФС-систем установлена интенсивность фотолюминесценции синглетного кислорода в D2O, а также активность в процессах фотокаталитического окисления триптофана в воде. Показано, что фотокаталитическая активность в реакции окисления триптофана фторированного тетрафенилпорфирина, иммобилизованного на полиэлектролитном комплексе АН–ХТ и твердом геле альгината, выше, чем активность ФТФП, иммобилизованного на твердом геле хитозана. Для выяснения механизма повышения активности порфирина при его закреплении на альгинат-содержащих носителях были изучены спектрально-люминесцентные свойства систем полисахарид–ФТФП и структура поверхности носителей методом атомно-силовой микроскопии. Высказано предположение, что причиной повышения фотокаталитической активности ФТФП при иммобилизации на альгинат-содержащие полисахаридные системы являются особенности надмолекулярной структуры твердых гелей.
Ключевые слова
хитозан альгинат натрия полиэлектролитный комплекс фторированные порфириновые фотосенсибилизаторы иммобилизация
Дата публикации
13.09.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
15

Библиография

  1. 1. Deda D.K., Iglesias B.A., Alves E. et al. // Molecules 2020. V. 25. 2080. https://doi.org/10.3390/molecules25092080
  2. 2. Solov’eva A.B., Aksenova N.A., Glagolev N.N. et al. // Russ. J. Phys. Chem. B. 2012. V. 6. P. 433. https://doi.org/10.1134/S1990793112060061
  3. 3. Hampton S. // The Diabetic Foot. 2004. V. 7. P. 162.
  4. 4. Salehi M., Ehterami A., Farzamfar S. et al. // Drug Deliv. and Transl. Res. 2021. V. 11. P. 142. https://doi.org/10.1007/s13346-020-00731-6
  5. 5. Белозерская Г.Г, Кабак В.А., Макаров В.А. Патент РФ № 2660582, 2018.
  6. 6. Castro K.A.D.F., Moura N.M.M., Figueira F. et al. // Int. J. Mol. Sci. 2019. V. 20. P. 2522. https://doi.org/10.3390/ijms20102522
  7. 7. Solovieva A.B., Rudenko T.G., Glagolev N.N. et al. // J. Photochem. Photobiol. B. 2020. V. 210. P. 111954. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2020.111954
  8. 8. Sharma M., Dube A., Majumder S.K. // Lasers Med. Sci. 2021. V. 36. P. 763. https://doi.org/10.1007/s10103-020-03083-2
  9. 9. Brovko O., Palamarchuk I., Gorshkova N. et al. // Izvestia Ufimskogo Nauchnogo Tsentra RAN. 2018. V. 2. P. 45. https://doi.org/10.31040/2222-8349-2018-2-3-45-49
  10. 10. Kulig D., Zimoch-Korzycka A., Król Z. et al. // Molecules. 2017. V. 22. P. 98. https://doi.org/10.3390/molecules22010098
  11. 11. Zare-Gachi M., Daemi H., Mohammadi J. et al. // Mater. Sci. Eng. C. 2020. V. 107. P. 110321. https://doi.org/10.1016/j.msec.2019.110321
  12. 12. Shershnev I.V., Glagolev N.N., Bragina N.A. et al. // Russ. J. Phys. Chem. B. 2014. V. 8. P. 1095. https://doi.org/10.1134/S1990793114080119
  13. 13. Kopylov A.S., Aksenova N.A., Savko M.A. et al. // Russ. J. Phys. Chem. A. 2022. V. 96. P. 444. https://doi.org/10.1134/S0036024422020133
  14. 14. Demina T.S., Kuryanova A.S., Aksenova N.A. et al. // RSC Adv. 2019. V. 64. P. 37652. https://doi.org/10.1039/C9RA07667K
  15. 15. Cherkasova A.V., Aksenova N.A., Zarkhina T.S. // Russ. J. Phys. Chem. A. 2022. V. 96. P. 2563. https://doi.org/10.1134/S003602442211005X
  16. 16. Zarkhina T.S., Aksenova N.A. and Solov’eva A.B. // Ibid. 2017. V. 91. P. 998. https://doi.org/10.1134/S0036024417060322
  17. 17. Sadykova O.V., Krivandin A.V., Aksenova N.A. et al. // Polym. Sci. Ser. A. 2021. V. 63. P. 154. https://doi.org/10.1134/S0965545X21020103
  18. 18. Singlet Oxygen Applications in Biosciences and Nanosciences. V. 1 / Ed. by Nonell S. and Flors C. Cambridge, 2016. P. 23.
  19. 19. Brovko O.S., Palamarchuk I.A., Boitsova T.A. et al. // Macromol. Res. 2015. V. 23. P. 1059. https://doi.org/10.1007/s13233-015-3140-z
  20. 20. Hermanto D., Mudasir M., Siswanta D. et al. // J. Math. Fundam. Sci. 2019. V. 51. P. 309. https://doi.org/10.5614/j.math.fund.sci.2019.51.3.8
  21. 21. Ayarza J., Coello Y., Nakamatsu J. // Int. J. Polym. Anal. Charact. 2016. V. 22. P. 1. https://doi.org/10.1080/1023666X.2016.1219834
  22. 22. Montembault A., Viton C., Domard A. // Biomacromolecules. 2005. V. 6. P. 653. https://doi.org/10.1021/bm049593m
  23. 23. Klimenko I.V., Gradova M.A., Gradov O.V. et al. // Khimicheskaya Fizika. 2020. V. 39. P. 43. https://doi.org/10.31857/S0207401X20050076
  24. 24. Solovieva A.B., Belyaev V.E., Glagolev N.N. et al. // Russ. J. Phys. Chem. A. 2005. V. 79. P. 635.
  25. 25. Зенькевич Э.И. // Рос. хим. журн. (Журн. Рос. хим. об-ва им. Д.И. Менделеева). 2017. Т. 61. С. 110.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека