ОХНМЖурнал физической химии Russian Journal of Physical Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-4537
  • ISSN (Online) 3034-5537

ВЛИЯНИЕ ИОНОВ МЕДИ(II) НА ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ЛИПОСОМ ИЗ ЛЕЦИТИНА В ВОДНОЙ СРЕДЕ

Код статьи
S0044453725060167-1
DOI
10.31857/S0044453725060167
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 99 / Номер выпуска 6
Страницы
964-970
Аннотация
Изучено взаимодействие ионов меди(II) с природными липидами (соевый лецитин, имеющий различный состав фосфолипидов) в водной среде. Используя методы тонкослойной хроматографии, динамического светорассеяния и математической обработки УФ-спектров по методу Гаусса, выявлено, что в водной среде лецитин образует достаточно крупные липосомы диаметром около 900 нм, размер которых уменьшается в присутствии ионов меди(II) независимо от их концентрации. Установлено, что ионы меди(II) как инициируют процессы перекисного окисления липидов, так и образуют комплексы с полярными «головками» фосфолипидов. Показано, что данные процессы зависят от состава липидов лецитина и их способности к окислению.
Ключевые слова
липосомы лецитин перекисное окисление липидов ионы меди (II) УФ-спектроскопия динамическое светорассеяние
Дата публикации
20.12.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
6

Библиография

  1. 1. Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. // Успехи химии. 1985. Т. 54. № 9. С. 1540
  2. 2. Frankel E.N. // Chem. And Phys. of Lipids. 1987. V. 44. № 2–4. P. 73.
  3. 3. Hensley K., Robinson K.A., Gabbita P., et al. // Free Radic. Biol. and Med. 2000. V. 28 (10). P. 1456
  4. 4. Niki E. // Free Radic. Biol. and Med. 2009. V. 47. № 5. P. 469. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2009.05.032
  5. 5. Oxidative Stress / Ed. by H. Sies. London: Academic Press, 1985. 507 p.
  6. 6. Burlakova Ye.B., Pal’mina N.P., Mal’tseva Ye.L. Membrane Lipid Oxidation / Ed. Carmen Vigo-Pelfrey. Boca Raton, Ann Arbor, Boston: CRC Press, 1991. V. III. P. 209
  7. 7. Valko M., Leibfritz D., Moncol J., et al. // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007. V. 39. P. 44. doi: 10.1016/j.biocel.2006.07.001
  8. 8. Wadhwa N., Mathew B.B., Jatawa S.K., Tiwari A. // Int. J. Curr. Sci. 2012. V. 3. P. 29 doi: 10.4103/0022-3859.123156
  9. 9. Крайник В.В., Ушкалова В.Н. // Журн. физ. химии. 2010. Т. 84. № 5. С. 998 [Kraynik V.V., Ushkalova V.N. // Russ. J. Phys. Chem. A. 2010. V. 84. № 5. P. 896]. doi: 10.1134/S00360244005033X
  10. 10. Zhang Y.M., Dong Zh. L., Yang H. Sh., et al. // J. Trace Elements in Med. and Biol. 2020. V. 61. P. 126561. doi: 10.1016/j.jtemb.2020.126561
  11. 11. Шишкина Л.Н., Дубовик А.С., Козлов М.В. и др. // Актуал. вопросы биолог. физики и химии. 2022. Т. 7. № 1. С. 160. doi: 10.29039/rusjbpc.2022.0499
  12. 12. Rigobello M.P., Scutari G., Boscolo R., Bindoli A. // Free Radic. Res. 2002. V. 36. P. 1071 doi: 10.1080/1071576021000006680
  13. 13. Lee S., Barin G., Ackerman C.M. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2016. V. 138. P. 7603. doi: 10.1021/jacs.6b02515
  14. 14. Bui N.T., Kang H., Teat S.J. et al. // Nature Commun. 2020. V. 11. P. 3947. doi: 10.1038/s41467-020-17757-6
  15. 15. Lutsenko S. // Curr. opinion in chem. biology. 2010. V. 14. P. 211. doi: 10.1016/j.cbpa.2010.01.003
  16. 16. Winter J. // Sci. Insights. 2024. V. 44. № 2. P. 1253. doi: 10.15354/st.24.re916
  17. 17. Awewomom J., Dzeble F., Takyi Y.D. et al. // Discov. Envir. 2024. V. 2. № 8. doi: 10.1007/s44274-024-00033-5
  18. 18. Sagheer U., Al-Kindi S., Abohashem S. et al. // JACC Adv. 2024. V. 3. № 2. doi: 10.1016/j.jacadv.2023.100815
  19. 19. Swain C.K. // Discov. Envir. 2024. V. 2. № 5. doi: 10.1007/s44274-024-00030-8
  20. 20. Gautam R., Priyadarshini E., Patel A.K. and Arora T. // J. of Envir. Sci. and Health. Part C. 2024. P. 1. doi: 10.1080/26896583.2024.2302738
  21. 21. Мудрый И.В. // Гигиена и санитария. 1997. № 1. С. 16.
  22. 22. Махинченко А.С., Пащенко А.Е. // Sci. Time. 2016. № 2 (26). С. 395.
  23. 23. Zhushan F. and Shuhua X. // Toxic. Mechanisms and Methods. 2020. V. 30. № 3. P. 167. doi: 10.1080/15376516.2019.1701594
  24. 24. Cheng S. // Envir. Sci. Res. Int. 2003. V. 10 (3). P. 192. doi: 10.1065/espr2002.11.141.1
  25. 25. Shrivastava A.K. // Indian J. of Envir. Protection. 2009. V. 29. № 6. P. 552.
  26. 26. Zhang Y., Zang W., Qin L. et al. // PLoS ONE. 2017. V. 12 (2). P. 1. doi: 10.1371/journal.pone.0170105
  27. 27. Rehman M., Liu L., Wang Q. et al. // Envir. Sci. Pollut. Res. 2019. V. 26. P. 18003. doi: 10.1007/s11356-019-05073-6
  28. 28. Li Q., Wang Y., Chang Zh. et al. // J. of Water Process Engin. 2024. V. 58. P. 104746. doi: 10.1016/j.jwpe.2023.104746
  29. 29. Барсукова Л.И. Биологические мембраны: Методы. М.: Мир, 1990. 423 с.
  30. 30. Shishkina L.N., Kushnireva Ye.V., Smotryaeva M.A. // Oxidation Commun. 2001. V. 24. № 2. P. 276.
  31. 31. Шишкина Л.Н., Кушнирева Е.В., Смотряева М.А. // Радиан. биология. Радиоэкология. 2004. Т. 44. № 3. С. 289. doi: 10.31857/S0869803123020108
  32. 32. Shishkina L.N., Kimovich M.A., Kozlov M.V. // Pharmaceutical and Medical Biotechnology: New Perspective. N.Y.: Nova Science Publishers, 2013. P. 151.
  33. 33. Jiang X., Zhang J., Zhou B., et al. // Sci. Rep. 2018. V. 8 (1). P. 14093. doi: 10.1038/s41598-018-32322-4
  34. 34. Шишкина Л.Н., Козлов М.В., Повх А.Ю., Швыдкий В.О. // Хим. физика. 2021. Т. 40. № 9. С. 57. doi: 10.31857/S0207401X21090089
  35. 35. Jaklová D.J., Jakl M., Nováková K. et al. // Monatsh Chem. 2015. V. 146. Р. 831. doi: 10.1007/s00706-014-1385-4
  36. 36. Poyton F.M., Sendecki A.M., Cong X., and Cremer P.S. // J. Am. Soc. 2016. V. 138 (5). Р. 1584. doi: 10.1021/jacs.5b11561
  37. 37. Kusler K., Odoh S.O., Silakov A., et al. // J. Phys. Chem. B. 2016. V. 120 (50). Р. 12883. doi: 10.1021/acs.jpcb.6b10675
  38. 38. Шишкина Л.Н., Парамонов Д.В., Климович М.А., Козлов М.В. // Биофизика. 2023. Т. 68. № 6. С. 1172. doi: 10.31857/S000630292306008X
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека