ОХНМЖурнал физической химии Russian Journal of Physical Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-4537
  • ISSN (Online) 3034-5537

Характерные параметры ненасыщенных ацильных остатков при жидкостной хроматографии липидов в средах с ионами серебра

Код статьи
S0044453725030081-1
DOI
10.31857/S0044453725030081
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 99 / Номер выпуска 3
Страницы
433-441
Аннотация
Обобщены результаты жидкостной хроматографии сложной смеси молекул ненасыщенных липидов как основы гидрофобного матрикса биомембран. Данные относительного удерживания таких липидов, включавших остатки наиболее важных жирных кислот, позволили рассчитать те наиболее характерные общие параметры, которые удовлетворительно определяют их поведение при внесении соли серебра в планарную или колоночную жидкостно-хроматографическую систему с целью резкого увеличения селективности разделения молекул ненасыщенных липидов между собой. Предложен вариант количественной оценки взаимосвязи уровня селективности отделения друг от друга отдельных молекул липидов природного происхождения с предлагаемыми параметрами входящих в их состав остатков жирных кислот, которые рассчитаны на базе вариаций химического потенциала таких молекул при появлении серебра в этой системе.
Ключевые слова
ионы серебра жидкостная хроматография ненасыщенные липиды
Дата публикации
13.09.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
17

Библиография

  1. 1. Zhang C.-W., Wang C.-Z., Tao R., Ye J.-Z. // J. Chromatogr. A. 2019. V. 1590. P. 58. DOI: 10.1016/j.chroma.2019.01.047
  2. 2. Lu H., Zhu H., Dong H., et al. // J. Chromatogr. A. 2019. V. 1613. № 460660. P. 1–7 DOI: 10.1016/j.chroma.2019.460660
  3. 3. Huang S., Qui R., Fang Z., et al. // Anal. Chem. 2022. V. 94. P. 13710. DOI: 10.1021/acs.analchem.2c01627
  4. 4. Ullah Q. // J. Planar Chromatogr. Modern TLC. 2020. V. 33. P. 329. DOI: 10.1007/s00764-020-00048-7
  5. 5. Yoon J., Choi E., Min K. // J. Phys. Chem. A. 2021. V. 125. № 46. P. 10103. DOI: 10.1021/acs.jpca.1c05292
  6. 6. Hamieh T. // J. Chromatogr. Sci. 2022. V. 60. № 2. P. 126. DOI: 10.1093/chromsci/bmab066
  7. 7. Petersen M.L., Hirsch J. // J. Lipid. Res. 1959. V. 1. P. 152.
  8. 8. Ren Q.H., Rybicki M., Sauer J. // J. Phys. Chem. C. 2020. V. 124. № 18. P. 10067. DOI: 10.1021/acs.jpcc.0c003061
  9. 9. Vysotsky Y.B., Kartashynska E.S., Vollhardt D., et al. // J. Phys. Chem. C. 2020. V. 124. № 25. P. 13809. DOI: 10.1021/acs.jpcc.0c03785
  10. 10. Leasor C., Chen K.-H., Closson T., Li Z. // J. Phys. Chem. C. 2019. V. 123. № 22. P. 13600. DOI: 10.1021/acs.jpcc.9b01705
  11. 11. Nikolova-Damyanova B., Christie W.W., Herslöf B.G. // J. Chromatogr. A. 1993. V. 653. № 1. P. 15.
  12. 12. Vahmani P., Rolland D.C., Gzyl K.E., Dugan M.E.R. // Lipids. 2016. V. 51. № 12. P. 1427. DOI: 10.1007/s11745-016-4207-0
  13. 13. Dabrowska M., Sokalska K., Gumulka P., et al. // JPC-J. Planar Chromatogr. –Modern TLC. 2019. V. 32. № 1. P. 13. DOI: 10.1556/1006.2019.32.1.2
  14. 14. Пчелкин В.П., Верещагин А.Г. // Докл. АН СССР. 1991. Т. 318. № 2. С. 473.
  15. 15. Pchelkin V.P., Vereshchagin A.G. // J. Chromatogr. 1991. V. 538. № 2. P. 373.
  16. 16. Pchelkin V.P., Vereshchagin A.G. // J. Chromatogr. 1992. V. 603. P. 213.
  17. 17. Pchelkin V.P. // Russ. J. Phys. Chem. 2000. V. 74. P. 625.
  18. 18. Пчёлкин В.П. // Журн. физ. химии. 2003. Т. 77. № 9. С. 1652.
  19. 19. Пчёлкин В.П. // Журн. физ. химии. 2016. V. 90. № 9. P. 409. DOI: 10.6878/S1004445371690235
  20. 20. Pchelkin V.P. // J. Anal. Chem. 2020. V. 75. № 5. P. 615. DOI: 10.1134/S1061934820050159
  21. 21. Pchelkin V.P. // Current Chromatogr. 2022. V. 9. № 2. P. 1. DOI: 10.2174/ 2213240609666220120120113938
  22. 22. Mahato P., Mandal K., Agrawai S., et al. // J. Phys. Chem. Lett. 2024. V. 15. № 2. P. 461. DOI: 10.1021/acs.lett.3c03188
  23. 23. Bhowmick S., Maisser A., Suleimanov Y.V., et al. // J. Phys. Chem. A. 2022. V. 128. № 37. P. 6376. DOI: 10.1021/acs.jpca.2c02809
  24. 24. Andryushechkin B.V., Pavlova T.V., Shevlyuga V.M. // Phys. Chem. Chem. Phys. 2024. V. 26. № 2. P. 1322. DOI: 10.1039/D3CP04962K
  25. 25. Yasumura S., Kato T., Toyao T., et al. // Phys. Chem. Chem. Phys. 2023. V. 25. P. 8524. DOI: 10.1039/d2cp04761f
  26. 26. Gao H., Bi S., Chai J., et al. // J. Chrom. A. 2024. V. 1714. № 464579. P. 1. DOI: 10.1016/j.chroma.2023.464579
  27. 27. Arroyave J.M., Ambrusi R.E., Pronsato M.E., et al. // J. Phys. Chem. B. 2020. V. 124. № 12. P. 2425. DOI: 10.1021/acs.jpcb.9b10430
  28. 28. Bigi F., Cera G., Maggi R., et al. // J. Phys. Chem. A. 2021. V. 125. № 46. P. 10035. DOI: 10.1021/acs.jpca.1c07253
  29. 29. Jayalatharachchi V., MacLeod J., Lipton-Duffin J. // J. Phys. Chem. C. 2021. V. 125. № 26. P. 14326. DOI: 10.1021/acs.jpcc.1c02581
  30. 30. Krzykawska A., Szwed M., Ossowski J., Cyganik P. // J. Phys. Chem. C. 2018. V. 122. № 1. P. 919. DOI: 10.1021/acs.jpcc.7b10806
  31. 31. Du Z., Ding P., Tai X., et al. // Langmuir. 2018. V. 34. № 23. P. 6922. DOI: 10.1021/acs.langmuir.8b00640
  32. 32. Rathnakumar S., Bhaskar S., Sivaramakrishnan V., et al. // Anal. Chem. 2024. V. 96. № 10. P. 4005. DOI: 1021/acs.analchem.3c01441
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека